EMBRION RIVOJLANISHI: GURUHLI KULTIVATSIYANING INDIVIDUAL TIME-LAPSE TIZIMIGA NISBATAN USTUNLIGI
Качество эмбрионального развития в программах ВРТ во многом определяется характеристиками микросреды, в которой проходит культивирование. Наиболее существенное влияние оказывают объём культуральной среды, степень её метаболической стабильности и возможность сохранения паракринных взаимодействий между развивающимися эмбрионами. Групповое культивирование, обеспечивая естественное биологическое взаимодействие и более стабильные физико-химические условия, способствует формированию благоприятного метаболического профиля и более высокому потенциалу развития до стадии бластоцисты. Индивидуальное культивирование в системах time-lapse предоставляет ценные диагностические данные, однако малый объём среды и отсутствие межэмбриональной коммуникации могут ограничивать её биологическую эффективность.
Анализ 436 клинических циклов продемонстрировал, что частота формирования бластоцист отличного и хорошего качества на 5-е сутки была выше при групповом культивировании (40,8%), чем при индивидуальном time-lapse культивировании (35,4%), при этом показатели оплодотворения и выход бластоцист поздних суток (6–7-е сутки) существенно не различались. Полученные данные подтверждают, что решающим фактором успешного эмбрионального развития является не столько метод визуального мониторинга, сколько качество микросреды, обеспечивающей физиологическую поддержку на ранних этапах развития. Таким образом, групповое культивирование может рассматриваться как более биологически и клинически эффективный подход в условиях современных эмбриологических лабораторий.
1. Ebner, T., Moser, M., Sommergruber, M., & Tews, G. (2010). Group culture of human zygotes is superior to individual culture in terms of blastocyst development and implantation: a randomized controlled trial. Fertility and Sterility, 94(2), 678–681.
2. doi:10.1016/j.fertnstert.2009.04.007
3. Fancsovits, P., Pribenszky, C., Murber, Á., Kaszás, Z., & Urbancsek, J. (2022). Prospective-randomized study comparing clinical outcomes of IVF treatments where embryos were cultured individually or in a microwell group-culture dish. Journal of Assisted Reproduction and Genetics.
4. doi:10.1007/s10815-022-02600-w
5. Ciray, H. N., Campbell, A., Aguilar, J., et al. (2014). Proposed guidelines on the nomenclature and annotation of dynamic human embryo monitoring using time-lapse imaging. Human Reproduction, 29(12), 2650–2660.
6. doi:10.1093/humrep/deu278
7. Vajta, G., & Rienzi, L. (2020). Time-lapse culture: methodological considerations and clinical impact. Reproductive Biomedicine Online, 41(4), 663–675.
8. doi:10.1016/j.rbmo.2020.06.006
9. Lane, M., & Gardner, D. K. (2000). Regulation of embryonic development by amino acids. Human Reproduction Update, 6(4), 447–453.
10. doi:10.1093/humupd/6.4.447
11. Gardner, D. K., & Lane, M. (1997). Culture and selection of viable blastocysts: a feasible proposition for human IVF? Human Reproduction Update, 3(4), 367–382.
12. doi:10.1093/humupd/3.4.367
13. Morbeck, D. E., Paczkowski, M., et al. (2014). Composition of protein supplements used for human embryo culture. Journal of Assisted Reproduction and Genetics, 31, 1703–1711.
14. doi:10.1007/s10815-014-0335-7
15. Rijnders, P. M., & Jansen, C. A. (1998). Paracrine interactions between embryos: role in embryo development. Human Reproduction, 13(4), 1036–1042.
16. doi:10.1093/humrep/13.4.1036
17. Swain, J. E. (2014). Optimizing the culture environment in the IVF laboratory: impact of pH, osmolality, and oxygen tension. Reproductive Biomedicine Online, 28(4), 476–486.
18. doi:10.1016/j.rbmo.2013.12.005
19. Ciray, H. N., Karagenc, L., et al. (2012). Time-lapse embryo imaging improves embryo selection but may be limited by culture conditions. Fertility and Sterility, 98(4), 863–870.
20. doi:10.1016/j.fertnstert.2012.06.046
МUROTOV F. (2025). QUMBOSGAN GEOLOGIK MAYDONI TEKTONIK BUZILISH ZICHLIGI XARITASINI TUZISH METODIKASI. «ACTA NUUz», 3(3.2.1), 282–283. Retrieved from https://journals.nuu.uz/index.php/actanuuz/article/view/10117
JOVLIYEVA, U., & TURSUNOVA, S. (2025). SOME INDICATORS OF WATER EXCHANGE IN MENTHA PIPERITA L. AND MENTHA ARVENSIS L. SPECIES. «ACTA NUUz», 3(3.2.1), 82–84. Retrieved from https://journals.nuu.uz/index.php/actanuuz/article/view/10118
NORMATOVA, N., & AGZAMOVA, I. (2025). SHAHAR HUDUDLARIDA MUHANDISLIK-GEOLOGIK TADQIQOTLAR UCHUN MAHALLIY ME’YOR-TARTIBGA SOLISH ASOSINI RIVOJLANTIRISH TAHLILI. «ACTA NUUz», 3(3.2.1), 284–286. Retrieved from https://journals.nuu.uz/index.php/actanuuz/article/view/10119
JO‘RAQULOV, J., & MUSTAFAYEV, I. (2025). DATA ON THE DISTRIBUTION OF REPRESENTATIVES OF THE GENUS MONILINIA IN UZBEKISTAN. «ACTA NUUz», 3(3.2.1), 85–87. Retrieved from https://journals.nuu.uz/index.php/actanuuz/article/view/10122
ОРИНБАЕВ, Б., ХАЙИТОВ, О., САБУРОВ, Н., МАШАРИПОВА, Ш., & ДАВЛАТБОЕВ, Ж. (2025). ГЕОДИНАМИКА ЮРСКО-ПАЛЕОЗОЙСКИХ СТРУКТУРНЫХ ПЛАНОВ ЗОНЫ СОЧЛЕНЕНИЯ СУДОЧЬЕГО ПАЛЕОПРОГИБА И БЕРДАХСКОГО ВАЛА. «ACTA NUUz», 3(3.2.1), 294–297. Retrieved from https://journals.nuu.uz/index.php/actanuuz/article/view/10123
IBRAGIMOVA, S., & ALLAMURATOV, M. (2025). INSECTS AS AN ALTERNATIVE SOURCE OF PROTEIN: A REVIEW OF THE POTENTIAL USE OF LOCUSTS (DOCIOSTAURUS MAROCCANUS) AS A DIETARY COMPONENT FOR LABORATORY RATS. «ACTA NUUz», 3(3.2.1), 88–90. Retrieved from https://journals.nuu.uz/index.php/actanuuz/article/view/10124
Copyright (c) 2026 «ВЕСТНИК НУУз»
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-ShareAlike» («Атрибуция — Некоммерческое использование — На тех же условиях») 4.0 Всемирная.
.jpg)
2.png)
