AZOT FIKSATSIYA VA FOSFAT MOBILIZATSIYA QILUVCHI BAKTERIYA SHTAMM VA IZOLYATLARINING MORFOLOGIK XUSUSIYATLARI
В данном исследовании были изучены морфологические характеристики семи штаммов и трёх изолятов, относящихся к родам Bacillus, Priestia и Pseudomonas, с использованием метода окраски по Граму и микроскопического анализа. Результаты показали, что среди семи штаммов четыре (P. endophytica N19, B. paralicheniformis M11, B. licheniformis X30, P. endophytica I16) и два из трёх изолятов (A8, X22) являются грамположительными, тогда как остальные обладают грамотрицательными свойствами. По форме клеток шесть штаммов были палочковидными, один (P. fulva Q11) — овально-палочковидным; среди изолятов два имели овально-палочковидную форму (A8, X22), а один (N4) — тонко-палочковидную. По признаку спорообразования у трёх штаммов (P. endophytica N19 – субтерминальное, N6 – терминальное, I16 – субтерминальное) и у одного изолята (X22 – субтерминальное) наблюдалось образование спор. Полученные данные показывают, что морфологические различия бактерий являются важным диагностическим критерием при определении их экологической устойчивости, жизнеспособности и биотехнологического потенциала.
1. Haritova S., Karimova D. Bacillus turkumining taksonomik va funksional xususiyatlari. Microbiology Journal, 2020, 15(2): 45–58.
2. Logan N.A., Vos P. Bacillus systematics: past, present and future. In: Logan N.A., De Vos P. (eds). Bacillus: Cellular and Molecular Biology. Norfolk: Caister Academic Press, 2015, pp. 1–20.
3. Ivanova I., Kiprianova E., Chuvilskaya N., et al. Taxonomic reevaluation of the genus Priestia based on morphological and molecular data. Journal of Bacteriology, 2019, 201(10): e00423-19.
4. Johnson L., Smith P. Morphological diversity of Pseudomonas spp. in various ecological niches. Applied Microbiology and Biotechnology, 2018, 102(12): 5153–5164.
5. Silby M.W., Winstanley C., Godfrey S.A., Levy S.B., Jackson R.W. Pseudomonas genomes: diverse and adaptable. FEMS Microbiology Reviews, 2011, 35(4): 652–680.
6. Kumar A., Singh P., Mishra S. Morphological characterization of environmental bacteria using microscopy techniques. Frontiers in Microbiology, 2021, 12: 674321.
7. Lee H., Kim S. Advances in microscopic analysis of bacterial morphology. Trends in Microbiology, 2020, 28(4): 305–317. 8. Khabib Kushiev, Kuralova R, Tokhir Husanov Pathogen Management in Glycyrrhiza glabra: Microbial Interactions and Phylogenetic Insights. Journal of Phytopathology. 01 April 2025. https://doi.org/10.1111/jph.70057
9. Gram H.C. Ueber die isolierte Färbung der Schizomyceten in Schnitt- und Trockenpräparaten. Fortschritte der Medicin, 1884, 2: 185–189.
10. Cappuccino J.G., Sherman N. Microbiology: A Laboratory Manual. 10th ed. Boston: Pearson, 2013, 560 p.
11. Madigan M.T., Bender K.S., Buckley D.H., Sattley W.M., Stahl D.A. Brock Biology of Microorganisms. 15th ed. New York: Pearson, 2018.
12. Nicholson W.L., Munakata N., Horneck G., Melosh H.J., Setlow P. Resistance of Bacillus endospores to extreme terrestrial and extraterrestrial environments. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 2000, 64(3): 548–572.
13. Nikaido H. Outer membrane barrier as a mechanism of antimicrobial resistance. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 1989, 33(11): 1831–1836.
14. Silby M.W., Winstanley C., Godfrey S.A., Levy S.B., Jackson R.W. Pseudomonas genomes: diverse and adaptable. FEMS Microbiology Reviews, 2011, 35(4): 652–680.
15. Perez-Garcia A., Romero D., de Vicente A. Plant protection and growth stimulation by microorganisms: biotechnological applications of Bacillus and Priestia species. Microbial Biotechnology, 2011, 4(4): 495–512.
16. Glick B.R. Plant growth-promoting bacteria: mechanisms and applications. Scientifica, 2012, Article ID 963401, 15 p.
Copyright (c) 2025 «ВЕСТНИК НУУз»
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution-NonCommercial-ShareAlike» («Атрибуция — Некоммерческое использование — На тех же условиях») 4.0 Всемирная.
.jpg)
2.png)
